Das Ziel der Studie war es, frühere Studien von Ivancsits et al. zu wiederholen (Ivancsits et al. 2002, Ivancsits et al. 2003), die einen Anstieg von DNA-Strangbrüchen in primären Fibroblasten implizierten, die intermittierend bei 50 Hz extrem niederfrequenten elektromagnetischen Feldern (ELF-EMF) exponiert wurden. Das Ziel der vorliegenden Arbeit war es, die Reproduzierbarkeit dieser Beobachtungen zu untersuchen und den Ursprung und die Natur der ELF-EMF-induzierten DNA-Schäden zu klären (es wurden identische experimentelle Bedingungen und Verfahren angewendet).
Wasserstoffperoxid wurde verwendet, um den durch oxidativen Stress-induzierten DNA-Schaden zu untersuchen.
Exposition | Parameter |
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Exposition 1:
50 Hz
Expositionsdauer:
5 min an - 10 min aus - für 15 h
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Exposition 2:
50 Hz
Expositionsdauer:
kontinuierlich für 15 h
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Frequenz | 50 Hz |
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Typ | |
Expositionsdauer | 5 min an - 10 min aus - für 15 h |
Zusatzinfo | with frequency components up to 1 kHz |
Expositionsquelle |
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Aufbau | four-coil system consisting of bifilar coils placed in a µ-metal box inside an incubator |
Schein-Exposition | Eine Schein-Exposition wurde durchgeführt. |
Messgröße | Wert | Typ | Methode | Masse | Bemerkungen |
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magnetische Flussdichte | 1 mT | - | - | - | - |
elektrische Feldstärke | 33,2 mV/m | Maximum | gemessen | - | induziertes Feld am Rand einer 10 cm Petrischale |
elektrische Feldstärke | 0 mV/m | - | gemessen | - | im Zentrum der Petrischale |
Frequenz | 50 Hz |
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Typ | |
Expositionsdauer | kontinuierlich für 15 h |
Zusatzinfo | with frequency components up to 1 kHz |
Expositionsquelle |
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Schein-Exposition | Eine Schein-Exposition wurde durchgeführt. |
Messgröße | Wert | Typ | Methode | Masse | Bemerkungen |
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magnetische Flussdichte | 1 mT | - | - | - | - |
elektrische Feldstärke | 33,2 mV/m | Maximum | gemessen | - | induziertes Feld am Rand einer 10 cm Petrischale |
elektrische Feldstärke | 0 mV/m | - | gemessen | - | im Zentrum der Petrischale |
Die Ergebnisse bestätigten, dass eine intermittierende Exposition (aber nicht eine kontinuierliche) von menschlichen primären Fibroblasten bei einem elektromagnetischem 50 Hz-Feld (bei einer magnetischen Flussdichte von 1 mT) einen leichten, aber signifikanten Anstieg der DNA-Fragmentierung im Komet-Assay induziert. Die Autoren liefern zum ersten Mal die Evidenz dafür, dass dies eher durch das Magnetfeld als durch das elektrische Feld verursacht wird (für diesen Zweck wurden die Zellen aus den zentralen und peripheren Bereichen der Petrischalen miteinander verglichen). Darüber hinaus zeigten die Autoren, dass die elektromagnetischen Feld-induzierten Reaktionen im Komet-Assay abhängig von der Zellproliferation waren, was darauf hindeutet, dass eher die Prozesse der DNA-Replikation beeinflusst worden sein könnten und nicht die DNA selbst. Übereinstimmend korrelierten die Wirkungen im Komet-Assay mit einer Verminderung der sich aktiv replizierenden Zellen und einer gleichzeitigen Erhöhung der apoptotischen Zellen in den exponierten Zellkulturen, wohingegen der Fpg-modifizierte Komet-Assay keine Evidenz für einen merklichen Beitrag eines oxidativen DNA-Basen-Schadens lieferte.
Daher sind die ELF-EMF-induzierten Wirkungen im Komet-Assay unter spezifischen Bedingungen reproduzierbar und können durch kleine Störungen in den S-Phase-Prozessen und eher durch eine gelegentliche Auslösung von Apoptose als durch die Erzeugung eines DNA-Schadens erklärt werden. Schließlich kann die S-Phasen-Abhängigkeit die Probleme bei der Reproduzierbarkeit der ELF-EMF-induzierten Komet-Assay-Wirkungen erklären (der Anteil von S-Phase-Zellen in einer Zell-Population wird durch die Kultur-Bedingungen und die verwendeten Zelllinien bestimmt, und diese Parameter können zwischen den Laboren variieren).
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